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Fundación para la Investigación
Sanitaria en Castilla-La Mancha

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Esta Unidad nace en el año 2006 de un acuerdo de colaboración entre la Consejería de Sanidad de Castilla La Mancha, la Universidad de Castilla – La Mancha y la Asociación Española contra el Cáncer.

Tiene como objetivos primordiales:

• Crear una estructura estable, aumentando la cantidad y calidad de los proyectos de investigación oncológica que se desarrollan en Castilla-La Mancha, estableciendo líneas de investigación sólidas y permanentes.
  
  
• Impulsar la investigación oncológica traslacional, promoviendo la creación de una estructura sólida de apoyo a los investigadores, especialmente al personal sanitario de Castilla-La Mancha
  
  
• Fomentar la interacción entre los distintos Servicios del Hospital, y entre éstos y los grupos de investigación de la Facultad de Medicina, con el fin de promover nuevos proyectos de investigación y líneas de trabajo que abarquen el estudio de la enfermedad de forma multidisciplinar, lo que redundará en una investigación de mayor calidad y beneficio del paciente oncológico.
  
  
• Atraer investigadores competitivos externos que contribuyan a impulsar de forma definitiva la investigación oncológica.
  
  
• Ser germen de proyectos de investigación oncológica de referencia y ofertar nuestra estructura al resto de investigadores de Castilla-La Mancha.

 

 

LÍNEAS DE INVESTIGACIÓN

• Estudio del papel de los genes EGF homeoticos DLK1 y DLK2 sobre el desarrollo tumoral. Implicaciones sobre la modulación de la ruta de los receptores Notch como blanco terapéutico.
• Estudios en cáncer de mama
  
  
• Caracterización y aislamiento de subpoblaciones celulares en tumores de piel y mucosa. Implicaciones en el diagnóstico y tratamiento de los carcinomas
  
  
• Dianas terapéuticas en oncología
• Mecanismos de acción de fármacos inhibidores de proteínas quinasas en neuroblastomas
• Inhibición farmacológica de la vía de las MAPK en melanoma.
• Proteínas con actividad quinasa en cáncer de mama con fenotipo triple negativo

RECURSOS HUMANOS

 

- Dr. Alberto Ocaña Férnandez,  Director Científico de la Unidad. Licenciado en Medicina por la Universidad de Alcalá de Henares y Doctor en Medicina por la Universidad de Salamanca. Sus líneas de investigación giran en torno al estudio de las rutas de señalización intracelular activadas por receptores tirosina quinasa en cáncer de mama con fenotipo triple negativo.

albertoo@sescam.jccm.es

- Dra. Rosario Serrano Vargas, Gestión del laboratorio. Licenciada en Bioquímica por la Universidad de Granada y Doctora en Ciencias por la Universidad de Castilla la Mancha. En la actualidad dirige la línea de investigación dedicada al estudio de las proteínas tirosina quinasa que se encuentran activadas en melanoma metastásico así como su inhibición farmacológica. Asesoramiento en técnicas de Citometría de flujo.
rsvargas@sescam.jccm.es

- Dra. Maria Dolores Cuenca López, contratada postdoctoral. Licenciada en Veterinaria por la Universidad de Murcia y Doctora en Ciencias por la Universidad Politécnica de Valencia. Línea de investigación: Estudio de vías de señalización en cáncer de mama con fenotipo triple negativo e inhibición farmacológica de dichas vías. Especialidad: Cultivos celulares y western blot.
mdcuencal@sescam.jccm.es

- Ana Isabel Naranjo Pastor, contratado predoctoral (Convenio AECC-Consejería de Sanidad y UCLM). Licenciada en C. Biológicas por la Universidad de Murcia. Actualmente se encuentra realizando su Tesis Doctoral acerca del mecanismo de acción de las proteínas DLK1 y DLK2 en la ruta de señalización de los receptores NOTCH y su implicación en la inhibición de los mismos en el desarrollo de cáncer de mama, co-dirigida por el Dr. Jorge Laborda y la Dra. MariaLuisa Nueda.  Especialidad: Cultivos celulares, western blot y PCR cuantitativa.
ainaranjo@sescam.jccm.es

- Raúl Calero Oliver, contratado predoctoral (Convenio AECC-Consejería de Sanidad y UCLM). Licenciado en C. Biológicas por la Universidad Autónoma de Madrid. Su principal dedicación consiste en la realización de la Tesis Doctoral acerca del  mecanismo de acción de fármacos inhibidores de proteínas con actividad tirosina quinasa en neuroblastomas infantiles, co-dirigida por el Dr. Ocaña y la Dra. Serrano.  Especialidad: Tratamientos farmacológicos en cultivos celulares y modelos in vivo, detección de activación de proteínas y técnicas inmunohistoquímicas.
rcoliver@msn.com

 

TECNICAS DISPONIBLES EN LA UNIDAD

• Cultivos celulares de líneas establecidas y cultivos primarios
• Biología molecular: PCR semicuantitativa y PCR cuantitativa a tiempo real, transfección génica de células eucariotas.
• Detección de proteínas: Extracción y cuantificación de proteínas, análisis por western blot, ELISA, arrays de fosfoproteínas.
• Citometría de flujo: inmunofenotipaje, análisis de proliferación , ciclo celular y apoptosis.
• Modelos in vivo: inducción de tumores en ratones inmunodeprimidos y tratamiento farmacológico.

RECURSOS MATERIALES

Sistemas de conservación en frío

• Refrigerador 4ºC: Modelo K4260  Liebherr.
• Congelador –20ºC: Modelo V.184*60 Liebherr.
• Congelador –80ºC. Modelo 994, 490L. Thermo Fisher Scientific
• Tanque N2 líquido. Modelo Air liquide TR26
• Tanque N2 líquido. Modelo Cryosystem 2000 de MVE .

Laboratorio de Cultivos celulares

• Campana de flujo laminar Telstar: Modelo AV100
• Incubador de CO2: Modelo 3111 Thermo
• Centrífuga refrigerada eppendorf. Modelo 5804R

Laboratorio de Biología Celular y Molecular

• Microondas: Modelo WP-750J Jens.
• Termobloque: Modelo Thermomixer confort de Eppendorf.
• Medidor de pH: Modelo pH-Meter Basic 20 de Crison.
• Placa agitadora con calefacción: Modelo ACS-161. SBS.
• Balanza: Modelo VIC-123 de Acculab.
• Balancín orbital: Modelo P4 Labnet.
• Balancín oscilante: Mini rocker Shaker MR-1.
• Balancín basculante:  Heidolp duomax 1030
• Vortex Mixer: Modelo S0200 Labnet.
• Termociclador PCR: Modelo C1000 de BioRad.
• Step one Plus real time PCR System (Applied Biosystem)
• Espectrofotómetro de placa: Modelo SPECTROstar Omega de BMG Labtech.
• Minicentrífuga eppendorf: Modelo 5415R.
• Minicentrífuga eppendorf: Modelo 5418
• Citómetro de flujo BD FACS Canto II.
  
  

Personal